实验原理是利用脂类染料（如苏丹黑或油红O）对血清脂蛋白进行预染，然后将预染的血清放置于琼脂糖凝胶板上进行电泳分离。通电后，脂蛋白会向正极移动，形成几个不同的区带。

试剂与器材

1. 尊龙凯时巴比缓冲液（pH 8.6，离子强度 0.075）：该溶液由154 g巴比/妥钠、276 g巴比/妥和0.292 g EDTA酸加水溶解后定容至1000 ml。
2. 三羟甲基/氨基甲/烷缓冲液（pH 8.6）：凝胶缓冲液由12.12 g三羟甲基/氨基甲/烷、0.29 g EDTA和15.85 g NaCl加水溶解后定容至1000 ml。
3. 琼脂糖凝胶：将0.45 g琼脂糖、50 ml三羟甲基/氨基甲/烷缓冲液和50 ml水混合，加热至溶解后立即停止加热。
4. 挖槽工具：制作切口刀，刀片长15 mm，中间夹有机玻璃或木片，用螺丝固定使两刀片相距15 mm；挖槽小匙用直径15 mm、约6 cm的铜丝，一端锤成扁平，用砂纸磨光。
5. 电泳槽及电泳仪：应与血清蛋白醋酸纤维薄膜电泳的设备相同。

操作步骤

1. 预染血清：将0.2 ml血清与0.2 ml苏丹黑染色液混合在小试管中，置于37℃水浴中染色30分钟后，离心（2000转/分，约5分钟）。
2. 制备琼脂糖凝胶板：将已配制的0.45%琼脂糖凝胶在沸水中加热融化，使用吸管将凝胶溶液注入载玻片，每片25 ml，静置约30分钟凝固（天气热时可延长时间，也可放入冰箱加速凝固）。
3. 点加血清：在已凝固的琼脂糖凝胶板一端约2 cm处，用切口刀垂直切入凝胶后立即取出，再用铜丝小匙提取长方小条的凝胶。用小片滤纸吸干小槽中的水分，利用血色素吸管吸取约15 μl经过预染的血清，注入凝胶板的小槽内。
4. 电泳：将加过血清的凝胶板平行放入电泳槽中，样品应在阴极一端。两块三层纱布浸入巴比/妥缓冲液后，轻轻紧密贴在凝胶板两端，纱布的另一端浸于电泳槽内的巴比/妥缓冲液中（注意：此电极缓冲液不能用三羟甲烷缓冲液替代）。接通电源，电压设为120~130V，每片电流为3~4mA。电泳约15至55分钟后，可观察到分离的色带。

注意事项

1. 电泳样品应为新鲜空腹血清。
2. 每一块凝胶上可平行挖两条小槽，以便加两个样品。
3. 可使用形状与小槽相同的有机玻璃片，在琼脂糖固化之前固定在适当位置，待凝固后取出，有助于直接加样，无需挖槽。
4. 如需保存电泳样本，可将电泳后的凝胶板（连同玻片）浸泡在清水中脱盐2小时，然后置于烘箱中（约80℃）烘干。

结果及临床意义

1. 正常人血清脂蛋白可形成三条区带，从负极到正极依次为β-脂蛋白（最深）、前β-脂蛋白（最浅）和α-脂蛋白（略深于前β-脂蛋白），原点处不应有乳糜微粒。
2. 若前β-脂蛋白深于α-脂蛋白，血清甘油三酯显著升高且胆固醇正常或略高，则可判断为Ⅳ型高脂蛋白血症。
3. 若β-脂蛋白区带明显加深，同时结合血清总胆固醇显著升高，甘油三酯正常者为Ⅱa型；如血清总胆固醇增高、甘油三酯略高于正常的前β略溶者则为Ⅱb型。
4. 若β-和前β-两区带相连，称“宽β区带”，并且血清甘油三酯与胆固醇均增高，可定为Ⅲ型。
5. 若原点出现乳糜微粒，而β和前β均正常或降低，同时血清甘油三酯显著升高，则可定为Ⅰ型。

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